DNA 上樣液 （ 藍 ）,60mL費用

操作步驟：
  DNA 上樣液 ( 藍 ),6×0mL費用切取含有目的DNA 片段的瓊脂糖凝膠條帶。
   ● 盡量切除不含有目的DNA 部分的凝膠，減少凝膠體積，提高DNA 回收率。
   ● 切膠時(shí)，請使用長(cháng)波長(cháng)UV  （360 nm ）光盒。且不要將DNA 長(cháng)時(shí)間暴露在紫外燈下，以防DNA 損傷。
2  稱(chēng)取凝膠的重量近似地確定其體積。
   ● 凝膠重量的稱(chēng)量方法：取.5 ml 離心管電子天平稱(chēng)初質(zhì)量，切膠裝在離心管后稱(chēng)終質(zhì)量，兩者差即為膠的質(zhì)量。不同離心管的重量可能有差異，因此，每個(gè)離心管的重量需單獨稱(chēng)量。
3  按照每00 mg 瓊脂糖凝膠對應00 µl 溶液BD 的比例，向離心管中加入溶液BD。
4  50 ℃水浴7-0min，直至凝膠*溶化。期間需要振蕩混合3 次。
   ● 瓊脂糖必須*融化，以免堵塞柱子，嚴重影響DNA 段的回收效率。
   ● 如果總體積大于500 µl，可適當增加溶膠時(shí)間。
   ● 若此時(shí)溶液變紅，可加0 µl 3M NaAC  （pH 5.2）。
5  將步驟4 所獲溶液置于DNA 純化柱中，靜置2min 。
   ● 膠塊*溶解后將膠溶液溫度降至室溫再上柱，因為純化柱在較高溫度時(shí)結合DNA  的能力較弱。
6  2,000 rpm 離心min。若溶液量大于DNA 純化柱的容積，可分兩次離心，棄濾液。
   ● 此時(shí)DNA 被吸附于DNA 純化柱中的硅膠膜上。
7  加入500 µl 溶液BD。2,000 rpm,  離心min，棄濾液
8  加入500 µl 溶液PE。2,000 rpm,  離心min，棄濾液。
   ● 溶液PE 初次使用前用無(wú)水乙醇按: 4 稀釋?zhuān)春?0% 乙醇。
   ● 此步驟的作用是將硅膠膜上吸附的蛋白、鹽等雜質(zhì)洗脫，以獲得高質(zhì)量DNA 段。
9  加入500 µl 溶液PE。2,000 rpm,  離心min，棄濾液。
0 2,000 rpm 離心  3min ，以*去除純化柱中的液體。
   ● 此步驟的作用是去除殘留乙醇，避免殘留乙醇影響后續酶促反應。同時(shí)也利于DNA 段的充分溶解。
  將離心柱置于新的.5 ml 離心管中。向純化柱的處，懸空滴加30-00 µl 溶液Eluent  （60℃預熱），靜置2min 。2,000 rpm  離心min，管底即為目的DNA 段。貯存于-20℃。
   ● 溶液Eluent 可用無(wú)菌雙蒸水代替，但其pH 需為8.0-8.5，加入體積視DNA 目的段的多少、用戶(hù)對目的濃度要求而定。
   ● 對溶液Eluent 60℃預熱，會(huì )提高提取DNA 目的段的產(chǎn)量。

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注意事項：
DNA 上樣液 ( 藍 ),6×0mL費用● 溶液PE *次使用前請按瓶上標簽加入4 倍體積的無(wú)水乙醇，即5 ml 溶液PE 中加入60 ml 無(wú)水乙醇，20 ml 溶液PE 中加入80 ml 無(wú)水乙醇，使用后立即蓋緊蓋子。
● 本產(chǎn)品對電泳使用的Agarose 種類(lèi)沒(méi)有嚴格限制，可以使用普通Agarose 。為了保證回收DNA 的質(zhì)量和DNA 回收效率，希望使用高純度的Agarose ，但沒(méi)有必要一定要使用低熔點(diǎn)的Agarose 等。
● 電泳時(shí)請使用新鮮配制的TAE 電泳緩沖液，以免影響電泳及回收效果。
● 請適當延長(cháng)電泳時(shí)間，在條帶分離清晰后進(jìn)行切膠回收，以免回收到多余雜帶。
● 為提高DNA 回收收率，切膠時(shí)應盡量除去多余的膠塊。
● 本試劑盒純化柱的DNA 吸附能力強。但如果DNA 濃度小，或DNA 初始量少，回收率將會(huì )偏低。
● 溶液Eluent（0 mM Tris-HCl, pH 8.5）中不含EDTA，其收集的DNA 片段可直接用于各種酶促反應等，不會(huì )影響后續試驗。
● 為了保證回收效率，請不要使用未調整pH 值的超純水洗脫目的片段。
● 請嚴格按照操作步驟操作。

問(wèn)：常用的DNA 濃度及純度檢測方法有哪些？
DNA 上樣液 ( 藍 ),6×0mL費用答：回收得到的DNA 片段可用瓊脂糖凝膠電泳和紫外分光光度計檢測濃度與純度。瓊脂糖凝膠電泳通過(guò)對比定量的Marker 來(lái)定量濃度；紫外分光檢測OD260/280 比值，OD260/280 比值在.7-.9 之間說(shuō)明所得  DNA  純度較好，如果洗脫時(shí)不使用溶液Eluent而使用去離子水，比值會(huì )偏低，因為pH 值和離子存在會(huì )影響光吸收值，但不表示純度低。

問(wèn)：長(cháng)片段回收時(shí)應注意哪些問(wèn)題？
答：DNA 上樣液 ( 藍 ),6×0mL費用當DNA 片段長(cháng)度較長(cháng)（5   kb 以上）時(shí)，回收效率會(huì )有所下降，這是DNA 切膠回收時(shí)的常見(jiàn)現象。此時(shí)建議按以下方法解決問(wèn)題：
    適當增加待回收DNA 樣品的點(diǎn)樣量；
    2 由于長(cháng)片段DNA 不易從樹(shù)脂上洗脫下來(lái)，建議洗脫兩次，可以提高洗脫效率；
    3 減少操作過(guò)程中對長(cháng)片段DNA 的物理?yè)p傷，如混合振蕩操作不要過(guò)于劇烈，切膠時(shí)不要將DNA 長(cháng)時(shí)間暴露在紫外等下。

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